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核酸相关> 反转录与PCR> PCR相关
产品编号: D8505S
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D8505S BeyoSTR™细胞株STR鉴定试剂盒(Human, 16 Loci) 50次 1998.00元
D8505M BeyoSTR™细胞株STR鉴定试剂盒(Human, 16 Loci) 200次 6298.00元

碧云天的BeyoSTR™细胞株STR鉴定试剂盒(Human, 16 Loci),英文名为BeyoSTR™ Cell Line Identification Kit by STR (Human, 16 Loci),也称Cell Line Authentication STR Profiling Kit、Cell STR Testing Kit,简称人细胞株STR鉴定试剂盒或细胞STR鉴定试剂盒,是一种通过多达16个STR位点进行多重荧光PCR和毛细管电泳,快速、准确、高灵敏地进行STR基因分型检测,以用于人源细胞株鉴定的试剂盒。本试剂盒也可用于人体样本的法医分析或亲缘关系鉴定等。

本产品和Thermo公司旗下Applied Biosystems品牌的CLA IdentiFiler™ Plus PCR Amplification Kit (A44660)和Promega公司的PowerPlex® 16 HS System (DC2100/DC2101)的检测原理和方法基本一致。

细胞株鉴定(Cell Line Authentication)是指对广泛应用于科学研究和药物开发的模式细胞进行鉴定。在科学研究过程中,如果使用了交叉污染或错误辨识的细胞将导致研究结论错误、结果不可重复、临床细胞治疗重大失误等严重问题出现。近年来NIH、ATCC、Nature和Science等多家组织机构多次呼吁,要求研究者对细胞株进行鉴定,从而避免相关问题发生[1]。

STR基因分型已被ICLAC、ATCC等权威机构作为金标准应用于细胞鉴定。STR (Short Tandem Repeat,短串联重复序列)基因位点由长度约为2~7个碱基对的短串连重复序列组成,这些重复序列广泛存在于人类基因组中,作为高度多态性标记,被称为细胞的DNA指纹。STR基因座位上的等位基因可通过PCR扩增区域内重复序列的拷贝数的不同来区分,根据所得的STR分型结果与多个数据库的细胞株STR数据进行比对,从而推算出样品所属的细胞株或可能的交叉污染的细胞株名称[2]。

培养过程中细胞株之间的交叉污染或细胞株本身的错误辨识是一个持续存在的问题。据统计,细胞交叉污染的发生频率接近16-35% [3-4]。因此,在下列情况中,建议对所使用的细胞株进行鉴定:1)新的细胞株进入实验室;2)细胞株经历长时间培养后(传代超过10代);3)准备新的细胞库或新构建的细胞株登记入册前;4)细胞株的表型发生明显变化或实验结果与预期相差较大时;5)使用细胞进行临床试验前;6)涉及细胞的项目或课题开始/结束时;7)使用冻存时间较久或相关信息标记不明确的细胞株进行实验前。

STR标记的多态性或信息性显示了不同来源的细胞中等位基因之间和位点之间重复单元数量的差异,如图1所示。从二倍体细胞株获得的染色体上的特定位点有两个等位基因的拷贝,分别来自不同的染色体(M/P,M为母本染色体,P为父本染色体)。如果STR基因的两个等位基因具有相同数量的重复单元,其扩增产物为具有相同大小的片段且在毛细电泳中表现为单个扩增峰;如果STR基因的两个等位基因具有不同数量的重复单元,则其对应扩增产物为两个不同大小的片段且在毛细电泳中表现为两个扩增峰[5]。通常情况下,人源或小鼠细胞的STR图谱中,一个基因座只会出现1个或2个扩增峰,若出现3个及以上扩增峰时,即称该位点存在多等位基因,此时可能为细胞样品存在三倍体等多倍体突变或细胞交叉污染的情况,具体还需要根据多等位基因出现的频率及最终与数据库的比对结果进一步确定。

图1.STR多态性分析示意图。

STR结果可以与ATCC、DSMZ及中国国家实验细胞资源共享平台等网站的数据库进行比对。目前,ATCC及DSMZ数据库通常采用9个位点(包括8个核心STR位点和Amelogenin性别决定位点)的STR数据计算待测细胞与匹配细胞的匹配度,当匹配度80%以上即可认为该细胞株正确。除此之外的STR位点则有助于提升细胞株鉴定的准确性及对来源接近的细胞株之间的分辨率,且位点越多,细胞鉴定的准确性及分辨率越高[6]。使用本试剂盒对PCR对照模板HT1080细胞(人成纤维肉瘤细胞)gDNA进行多重荧光PCR及毛细管电泳分析的结果请参考图2。其对应数据在DSMZ数据库的比对结果如图3所示。

图2.碧云天BeyoSTR™细胞株STR鉴定试剂盒(Human, 16 Loci) (D8505)用于HT1080细胞(人成纤维肉瘤细胞)STR基因分型的检测效果图。使用本试剂盒以200ng HT1080细胞gDNA为模板进行多重荧光PCR扩增,产物使用ABI测序仪(3730xl DNA Analyzer)与50cm毛细管分析。x轴代表产物及内标GeneScan™ 500 LIZ的碱基数,y轴代表相对荧光强度。蓝色峰显示FAM荧光素标记的基因座的峰:D3S1358、TH01、D21S11、D18S51和Penta E;绿色峰显示HEX标记的基因座的峰:D5S818、D13S317、D7S820、D16S539、CSF1PO和Penta D;黑色峰显示TAMRA标记的基因座的峰:Amelogenin (AMEL/AME/AM)、vWA、D8S1179、TPOX和FGA;橙色峰显示GeneScan™ 500 LIZ®的100bp至430bp片段。图中各位点的等位基因读取,参见使用说明的“4.结果读取和分析”。实际检测结果会因样品、检测仪器等的不同而存在差异,图中检测结果仅供参考。

图3.使用本试剂盒对HT1080细胞(人成纤维肉瘤细胞)进行细胞株鉴定的结果图。将上述分析所得的HT1080细胞STR图谱数据输入DSMZ数据库进行比对,结果显示该细胞与HT1080细胞匹配度为96%,可认为该细胞株正确,其D13S317位点出现的多等位基因可能为细胞变异。CCL-121为HT1080细胞在ATCC的编号。实际检测结果会因样品、检测仪器等的不同而存在差异,图中检测结果仅供参考。

本试剂盒基于多重荧光PCR-毛细管电泳法,可用于对人源细胞的16个基因座(15个STR位点和1个性别位点)进行多重扩增和三色荧光检测。检测的基因座包括D3S1358、TH01、D21S11、D18S51、Penta E、D5S818、D13S317、D7S820、D16S539、CSF1PO、Penta D、Amelogenin、vWA、D8S1179、TPOX和FGA,共16个位点,其中Amelogenin为性别确定位点。具体信息如下表:

Loci Allele (Repeat #) Size range Fluorescent Marker
D3S1358 TCTA[TCTG]n[TCTA]n 95-151bp FAM
TH01 [AATG] 152-195bp FAM
D21S11 [TCTA], [TCTG] 154, 199-273bp FAM
D18S51 [GAAA] 275-410bp FAM
Penta E [AAAGA] 379-474bp FAM
D5S818 [AGAT] 110-163bp HEX
D13S317 [GATA] 164-211bp HEX
D7S820 [GATA] 211-255bp HEX
D16S539 [GATA] 256-308bp HEX
CSF1PO [AGAT] 310-361bp HEX
Penta D [AAAGA] 365-459bp HEX
Amelogenin / 107, 113bp TAM
vWA [AGAT] 130-193bp TAM
D8S1179 [TATC] 195-255bp TAM
TPOX [AATG] 254-302bp TAM
FGA [TTTC]3TTTTTTCT[CTTT]nCTCC[TTCC]2 305-464bp TAM

本试剂盒提供了扩增上述16个基因座所需的全部试剂,用户可在扩增完成后通过毛细管电泳分析待测样品生成等位基因图谱,从而进行最终的结果分析。本试剂盒同时提供PCR对照模板(HT1080细胞基因组),可辅助判断试剂盒是否正常工作,同时可作为结果分析的参考。如需获取本试剂盒对应的数据分析panel,可联系碧云天技术服务service@beyotime.com

按使用说明操作,扩增体系的体积为10µl时,本试剂盒的小包装和中包装分别可以进行50次和200次反应。

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
D8505S-1 BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X) 125µl
D8505S-2 BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X) 125µl
D8505S-3 Control Template (400ng/µl) 5µl
D8505S-4 Ultrapure Water 300µl
说明书 1份

产品编号 产品名称 包装
D8505M-1 BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X) 500µl
D8505M-2 BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X) 500µl
D8505M-3 Control Template (400ng/µl) 20µl
D8505M-4 Ultrapure Water 1.2ml
说明书 1份
保存条件:

-20ºC保存,一年有效。其中BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X)须避光保存。

注意事项:

本试剂盒仅提供多重荧光PCR实验所需试剂,如需对产物进行毛细管电泳及分析,可联系碧云天技术服务service@beyotime.com。碧云天同时提供专用于STR基因分型多重扩增的高效PCR预混液BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X) (D8507)。

建议使用带滤芯的吸头配制PCR体系,这样可以最大限度的避免污染。推荐使用碧云天BeyoGold™无菌滤芯盒装吸头(FTIP631/FTIP635/FTIP638)。

BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X)中含有荧光染料,保存本产品或设置荧光PCR反应时应避免强光照射,以尽量避免发生荧光淬灭。

经测试,本试剂盒反复冻融10次对使用效果无显著影响,但仍需尽量避免反复冻融。反复冻融可能使产品性能下降。

样品进行多重荧光PCR后,需要使用毛细管电泳仪进行分离基因分析。当使用不同的聚合酶或仪器组合时,等位基因的大小可能会有所不同。

由于本试剂盒灵敏度特别高,通常建议把样品制备的房间、PCR反应体系配制的房间、处理扩增产物的房间按顺序分成3个房间,以避免出现产物污染的情况。通常对于PCR产物进行开盖和毛细管电泳分析的地方,宜远离样品制备和PCR反应体系设置的地方。

对于毛细管电泳、分析或直接进行细胞株STR鉴定,可联系碧云天技术服务service@beyotime.com,或点击https://www.beyotime.com/support/STR.htm

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.样品(Sample)准备。
选择合适的基因组DNA提取试剂盒,对正常或待测的细胞样品进行基因组DNA抽提。推荐使用碧云天的基因组DNA小量抽提试剂盒(通用型, 离心柱式) (D0063)、动物基因组DNA快速抽提试剂盒(PCR分析用) (D0065)或BeyoMag™基因组DNA小量抽提试剂盒(通用型, 磁珠法) (D0088)。具体的细胞或组织样品裂解的制备步骤请参考相关试剂盒的使用说明。
注1:用于检测的基因组DNA浓度应大于20ng/µl,A260/280大于1.80,且无明显降解,总量50-200ng。
注2:制备好的基因组DNA应立即使用或适当分装后-20ºC保存,尽量避免反复冻融。
2.PCR反应体系的设置。
a.融解并混匀反应所需的各种溶液,置于冰上待用。
b.首次扩增建议参考下表设置不同的实验组以确保实验的顺利进行。
Group Template
Sample Genomic DNA from Test Cells
Positive Control Control Template (400ng/µl) (D8505-3)
Blank Control Ultrapure Water (D8505-4)
c.参考下表在冰浴上设置PCR反应体系。
Reagent Test Sample Positive Control Blank Control
BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X) 2.5µl 2.5µl 2.5µl
BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X) 2.5µl 2.5µl 2.5µl
Genomic DNA from Test Cells (50-200ng) xµl - -
Control Template (400ng/µl) - 0.5µl -
Ultrapure Water (5-x)µl 4.5µl 5µl
Total Volume 10µl 10µl 10µl
d.用移液器轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀,室温离心数秒,使液体积聚于管底。
e.把配制好的PCR反应管置于PCR仪上,按照下表设置PCR程序,进行PCR反应。
Step Temperature Time Cycles
Initial Denaturation 94ºC 3min 1
Denaturation 94ºC 30s 30
Annealing 60ºC 30s
Extension 72ºC 30s
Final Extension 72ºC 10min 1
Hold 4ºC - -
注:完成PCR扩增后,将样品放置于-20ºC避光保存。模板DNA的数量和质量会影响PCR的产量。因此对于具有不同DNA丰度的样品,需对模板DNA的用量及循环数进行一定的优化,推荐使用50-200ng模板DNA,循环数可根据DNA用量的变化进行调整,但不宜超过32个循环。
3.毛细管电泳分析。
使用遗传分析仪毛细管电泳检测待测样品及对照样品的多重PCR扩增产物。如需进行毛细管电泳分析,可联系碧云天技术服务service@beyotime.com
4.结果读取和分析。
通常毛细管电泳最终的结果仅显示对应STR位点的扩增峰个数及其对应扩增片段的大小(Size),需要进一步将待测细胞各STR位点扩增片段个数和大小转化为等位基因数和实际重复序列数(Repeat number),然后才能根据相应的结果在ATCC、DSMZ、CLASTR等数据库进行比对,以确定细胞种类及判断细胞有无污染情况。
a.峰图分析。对于特定位点首先分析峰的个数,峰的个数代表该位点等位基因的情况。单峰:纯合子,此时两个等位基因重复序列数一样,仅需读取一个片段的大小;双峰:杂合子,此时两个等位基因重复序列数不一样,需分别读取两个片段的大小;峰数≥3:多等位基因,需读取多个片段的大小。通常,如果多个基因座出现3个或4个等位基因,则说明样品有污染,但实际上,融合/杂交细胞以及很多肿瘤细胞都存在多个多等位基因,还需要结合数据库的位点信息进行分析和判断。
图2中各位点的等位基因读取示例如下:(1)在D3S1358位点的大小范围内只有1个峰,因此HT1080细胞D3S1358位点为单等位基因,读取片段大小为130bp;(2)在D18S51位点的大小范围内有2个峰,因此HT1080细胞D18S51位点为双等位基因,读取片段大小分别为301bp和325bp;(3)在D21S11位点的大小范围内有3个峰,因此HT1080细胞D21S11位点为多等位基因,读取片段大小分别为218bp,222bp和226bp。
b.各位点等位基因的实际重复序列数(Repeat number)的计算和分析。用户可根据情况选择下列任一种方式进行STR位点重复序列数(Repeat number)的计算和分析。若测试的细胞样品数量较多,建议使用GeneMapper ID或GeneMarker软件导入或新建panel之后再进行数据分析。如需获取本试剂盒对应软件的panel数据,可联系碧云天技术服务service@beyotime.com。如无法获取对应的分析软件或测试的样品数量较少,也可参考下表对待测细胞各STR位点的实际重复序列数进行大致计算(个别位点可能存在一定误差)。
Loci Size of Control Template (S0, bp) Repeat number of Control Template (N0) Size of Test Sample (S, bp) Repeat number of Test Sample (N)
D3S1358 130 16 S1 N1=16+(S1-130)/4
TH01 165 6 S2 N2=6+(S2-165)/4
D21S11 218 28 S3 N3=28+(S3-218)/4
D18S51 301 12 S4 N4=12+(S4-301)/4
Penta E 379 5 S5 N5=5+(S5-379)/5
D5S818 132 11 S6 N6=11+(S6-132)/4
D13S317 195 12 S7 N7=12+(S7-195)/4
D7S820 227 9 S8 N8=9+(S8-227)/4
D16S539 281 9 S9 N9=9+(S9-281)/4
CSF1PO 345 12 S10 N10=12+(S10-345)/4
Penta D 400 9 S11 N11=9+(S11-400)/5
Amelogenin / X=107bp;Y=113bp / /
vWA 140 14 S13 N13=14+(S13-140)/4
D8S1179 229 13 S14 N14=13+(S14-229)/4
TPOX 271 8 S15 N15=8+(S15-271)/4
FGA 349 22 S16 N16=22+(S16-349)/4
注1:S0为按照说明书操作对Control Template (400ng/µl) (D8505-3)进行扩增,产物使用ABI测序仪(3730xl DNA Analyzer)与50cm毛细管分析,然后采用GeneMarker V2.2.0软件读取所得的各位点较小Allele对应的扩增片段大小。使用不同仪器检测或软件分析时该片段大小会有一定误差,表中值仅作参考。用户首次进行实验时需同时扩增Control Template并根据实际的检测结果对该值及相应的计算公式进行修正。
注2:N为各STR位点对应的Repeat number,其通常为整数,但也可能存在微变异等位基因而多出1-3bp,多出的碱基数以小数点标记。以D18S51位点为例,其重复形式为[GAAA]13GAA时,其Repeat number为13.3。按照上表计算所得的Repeat number非整数时,首先应检查软件自动读取或手动读取的扩增片段大小是否存在偏差,确保读取片段大小无误后,应按照下列规则重新计数Repeat number:N=N0+n+0.1m,其中n即为原公式中(S-S0)/4或(S-S0)/5部分计算所得的商,m即为原公式中(S-S0)/4或(S-S0)/5部分计算所得的余数。如对于D21S11位点,片段大小读取过程无偏差的情况下,测得Control Template的其中一个扩增片段大小为S0=218bp,待测样品的某扩增片段大小为S3=228bp,根据公式(S3-S0)/4=(228-218)/4=2余2,故商n=2;余数m=2,此时N3=N0+n+0.1m=28+2+0.1×2=30.2。
注3:读取峰值时会受到仪器或软件的影响,片段大小可能显示为非整数,或存在±0.5bp的误差,因此采用手动计算的方式进行数据分析时,需对结果进行进一步的分析与校正,必要时可采取四舍五入法读取片段大小。
注4:推荐联系碧云天技术服务service@beyotime.com进行毛细管电泳和STR的数据分析。
c.数据库比对分析
根据以上方法确定待测细胞各位点的等位基因个数和各等位基因的重复序列数后,根据得到的结果在CLASTR数据库(https://www.cellosaurus.org/str-search/)或DSMZ数据库(https://celldive.dsmz.de/str/search)进行比对以确定细胞种类,匹配度≥80%时,认为它们具有相关性(为同一个细胞或来自同一个亲本细胞);匹配度在55-80%之间,需要进一步验证;匹配度<55%时,认为它们不具有相关性。
常见问题:
1.等位基因峰值缺失或过低。
a.在使用之前没有充分振荡混匀BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X)。在制备PCR扩增反应液之前应漩涡振荡BeyoSTR™ Multiplex PCR Master Mix (4X) 5-10秒。
b.引物浓度过低。使用推荐的引物浓度,使用之前BeyoSTR™ Human 16 Loci Primer Mix (4X)将混合液漩涡振荡15秒。
c.扩增模板过少。增加模板用量。
2.在一个或多个电泳通道出现额外的杂峰。
a.测试样品(Sample)被另外的DNA模板污染,或存在先前的扩增产物。可能存在交叉污染,应使用防回吸的BeyoGold™无菌滤芯盒装吸头(FTIP631/FTIP635/FTIP638),并及时更换手套,不在样品制备和加样的房间打开扩增后的PCR产物。
b.扩增模板过量会导致较多的非特异峰。请根据推荐模板用量(50-200ng)进行扩增。
c.STR系统的PCR扩增可能会出现一个比等位基因少一个碱基的非特异峰,这是由于3'末端加A不完全造成的。热循环完成后,可适当增加延伸时间。
d.减少循环次数。
参考文献:
1.Almeida JL, Cole KD, Plant AL. PLoS Biol. 2016. 14(6):e1002476.
2.Bornman DM, Hester ME, Schuetter JM, Kasoji MD, et al. Biotech Rapid Dispatches. 2012. 2012:1-6.
3.Nelson-Rees WA. Prog Clin Biol Res. 1978;26:25-79.
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5.Reid Y, Storts D, Riss T, et al. Assay Guidance Manual [Internet]. 2013.
6.Gu M, Liu J, Yang M, et al. Gene. 2020;763:145048.
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